Главная Главная

CCAMLR

Комиссия по сохранению морских живых ресурсов Антарктики

  • Главная
  • Перейти к контенту сайта
  • Вход
  • Моя учетная запись

Форма поиска

  • Об АНТКОМ
  • Меры по сохранению
  • Наука
  • Промыслы
  • Соблюдение
  • Данные
  • Совещания
  • Публикации
  • Циркуляры
Photo by James Clark
  • English
  • Français
  • Русский
  • Español
  • Главная
  • Наука
  • Observer sampling requirements for Dissostichus spp.

Наука

  • Научный комитет
    • Представители в Научном комитете
    • Рабочая группа по экосистемному мониторингу и управлению (WG-EMM)
    • Рабочая группа по оценке рыбных запасов (WG-FSA)
    • Рабочая группа по статистике, оценкам и моделированию (WG-SAM)
    • Рабочая группа по побочной смертности, связанной с промыслом (WG-IMAF)
    • Рабочая группа по методам акустики, съемки и анализа (WG-ASAM)
  • Система АНТКОМ по международному научному наблюдению (CMHH)
    • Информация для технических координаторов и научных наблюдателей
    • Национальные технические координаторы
    • Программа АНТКОМ по мечению
      • Информация о заказе оборудования для выполнения Программы АНТКОМ по мечению
    • Доска почета наблюдателей
  • Программа АНТКОМ по мониторингу экосистемы (CEMP)
  • Программа АНТКОМ по морским отбросам
  • Система научных стипендий АНТКОМ
    • Система научных стипендий АНТКОМ – предыдущие стипендиаты
  • Морские охраняемые районы (МОР)
    • Области планирования МОР
  • Уязвимые морские экосистемы (УМЭ)
Print this page
Increase font size
Decrease font size

Observer sampling requirements for Dissostichus spp.

1.   Observer sampling requirements for Dissostichus spp. in longline fisheries based on the data collection plan described in WG-FSA-10/32 (SC-CAMLR-XXIX, Annex 8, paragraph 5.34; SC-CAMLR-XXIX, paragraph 3.187). These sampling requirements serve as the default sampling requirements by subarea or division, unless alternative sampling requirements are agreed through the research plan review process. General sampling requirements are listed in Annex 1 of the CCAMLR Scheme of International Scientific Observation.

2.   Biological measurements Type I: includes species, total length, sex and gonad stage as per CM 41-01, Annex B, paragraph 6.

3.   Biological measurements Type II: includes species, total length, sex, gonad stage and total weight as per CM 41‑01, Annex B, paragraph 6.

4.   Biological measurements Type III: includes otolith samples and all Type II data.

5.   All recaptured toothfish should be sampled as Type III in addition to the sample number in the table.

Sample numbers in the table below indicate sampling of all fish up to the number listed in the table.

 

Fisheries in subarea/division

Species

Type I

Type II

Type III

48.2, 48.5, 58.4.4a, 58.4.4b, 88.3

D. mawsoni

n/a

35

10

D. eleginoides

n/a

35

10

 

 

 

 

 

48.6, 58.4.1, 58.4.2, 58.4.3a

D. mawsoni

n/a

35

10

D. eleginoides

n/a

35

10

 

 

 

 

 

88.1, 88.2

D. mawsoni

n/a

35

10

D. eleginoides

n/a

35

10

To help ensure that the work of observers is not unduly impacted by such operational changes, the sampling rate should be up to 7 fish per 1 000 hooks.

As a practical procedure to achieve the desired samples, observers should sample up to 10 fish per line for Type III (which includes all type II data plus 10 otoliths), then up to 25 fish per line for Type II, to an overall total of 35 fish per line (assuming an average line of 5 000 hooks).

Ross Sea Data Collection Plan Observer Sampling Requirements

Additional Data Collection

Frequency

Instructions

Toothfish otoliths

TOA & TOP: Area 88.1 and 88.2H: 10 per set for each species, 5 per sex

TOA & TOP: SSRUs 88.2C-G: 10 fish each sex per 5cm length bin from 50-180cm (up to 260 otoliths for all 5 SSRUs combined).

Standard SISO otolith collection protocols in observer manual

Macrourid biological data

ID to species, total length, snout anus length, weight, sex, gonad stage and gonad weight

Standard SISO biological sampling protocols in observer manual

Macrourid otoliths

5 otolith pairs every set (from fish with biological data collected, from multiple species if available)

Standard SISO otolith collection protocols in observer manual

Skate tag recaptures

Scan every skate for tags, identify species, photograph tags, sample biologically, collect thorns and freeze with label including tag number.

Standard skate biological sampling protocols in observer manual. Label with vessel name, haul number and date. Instructions for collection and storage of thorns can be found here.

Skate biologicals

On any retained skates (including tag recaptures) , identify to species, measure pelvic length, total length, and wingspan, weight, gonad stage and injury codes.

Standard SISO biological sampling protocols in observer protocols

Coordinate with NIWA (Brit [dot] Finucci [at] niwa [dot] co [dot] nz) to arrange transport of skate thorns to NIWA:

Brit Finucci

NIWA

301 Evans Bay Parade,

Hataitai, Wellington 6021

New Zealand

+6443860583

If vessels are passing through Port Stanley, samples can be passed to their agents (Roy Summers, Sulivan Shipping Ltd.) for the attention of:

Joost Pompert

Georgia Seafoods Ltd

10 Boxer Bridge Road

Stanley

Falkland Islands

+500 22616 ext 110

This page was last modified on 21 Nov 2024

Контакты

E-mail: ccamlr [at] ccamlr [dot] org
Телефон: +61 3 6210 1111
Факс: +61 3 6224 8744
Адрес: 181 Macquarie Street, Hobart, 7000, Tasmania, Australia

 

Быстрые ссылки

  • Вакансии
  • Лицензированные суда
  • Список действующих мер по сохранению 2024/25 г.
  • Достижения АНТКОМ

Current and Upcoming Meetings

  • WG-SAM-2025
  • WG-ASAM-2025
  • WG-EMM-2025

Footer Links Russian

  • Вход
  • Веб-почта
  • Обсуждения АНТКОМ
  • э-группы АНТКОМ
  • Служба поддержки
  • Авторское право
  • Отказ от ответственности и конфиденциальность
  • Карта веб-сайта
© Copyright - the Commission for the Conservation of Antarctic Marine Living Resources 2025, Все права защищены.  |  Наверх  |  Сайт разработан компанией Eighty Options